2.43
1.65
1.98
0.73
1.88
1.81
2.43
2.2 Substancat standarde të përdorura në kurbën e kalibrimit të shpërndarjes së masës molekulare relative: insulinë, mikopeptide, glicinë-glicinë-tirozinë-argininë, glicinë-glicinë-glicinë
3 Instrumente dhe pajisje
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20.8
23.9
27.5
Në përgjithësi, përqindja e aminoacideve në produktet e Sustar është më e lartë se ajo në produktet e Zinpro.
Pjesa 8 Efektet e përdorimit
Efektet e burimeve të ndryshme të mineraleve gjurmë në performancën e prodhimit dhe cilësinë e vezëve të pulave vezë në periudhën e vonë të vezëve
Procesi i Prodhimit
Teknologjia e kelimit të synuar
Teknologjia e emulsifikimit me prerje
Teknologjia e spërkatjes dhe tharjes me presion
Teknologjia e ftohjes dhe tharjes së lagështirës
Teknologji e përparuar e kontrollit mjedisor
Shtojca A: Metodat për Përcaktimin e Shpërndarjes së Masës Molekulare Relative të Peptideve
Miratimi i standardit: GB/T 22492-2008
1 Parimi i Testit:
U përcaktua me anë të kromatografisë së filtrimit me xhel me performancë të lartë. Kjo do të thotë, duke përdorur mbushës poroz si fazë stacionare, bazuar në ndryshimin në madhësinë e masës molekulare relative të përbërësve të mostrës për ndarje, të zbuluar në lidhjen peptide të gjatësisë së valës së absorbimit ultravjollcë prej 220 nm, duke përdorur softuerin e dedikuar të përpunimit të të dhënave për përcaktimin e shpërndarjes së masës molekulare relative me anë të kromatografisë së filtrimit me xhel (domethënë, softuerin GPC), kromatogramet dhe të dhënat e tyre u përpunuan, të llogaritura për të marrë madhësinë e masës molekulare relative të peptidit të sojës dhe diapazonin e shpërndarjes.
2. Reagentë
Uji eksperimental duhet të përmbushë specifikimet e ujit sekondar në GB/T6682, përdorimi i reagentëve, përveç dispozitave të veçanta, është analitikisht i pastër.
2.1 Reagentët përfshijnë acetonitrilin (kromatografikisht të pastër), acidin trifluoroacetik (kromatografikisht të pastër),
2.2 Substancat standarde të përdorura në kurbën e kalibrimit të shpërndarjes së masës molekulare relative: insulinë, mikopeptide, glicinë-glicinë-tirozinë-argininë, glicinë-glicinë-glicinë
3 Instrumente dhe pajisje
3.1 Kromatograf i Lëngshëm me Performancë të Lartë (HPLC): një stacion pune ose integrator kromatografik me një detektor UV dhe një softuer për përpunimin e të dhënave GPC.
3.2 Njësi filtrimi dhe degazimi me vakum në fazën mobile.
3.3 Peshorja elektronike: vlerë e graduar 0.000 1g.
4 hapa operimi
4.1 Kushtet kromatografike dhe eksperimentet e adaptimit të sistemit (kushtet referuese)
- 4.1.1 Kolonë kromatografike: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (diametri i brendshëm) ose kolona të tjera xheli të të njëjtit lloj me performancë të ngjashme të përshtatshme për përcaktimin e proteinave dhe peptideve.
- 4.1.2 Faza mobile: Acetonitril + ujë + acid trifluoroacetik = 20 + 80 + 0.1.
- 4.1.3 Gjatësia e valës së zbulimit: 220 nm.
- 4.1.4 Shpejtësia e rrjedhjes: 0.5 mL/min.
- 4.1.5 Koha e zbulimit: 30 minuta.
- 4.1.6 Vëllimi i injektimit të mostrës: 20μL.
- 4.1.7 Temperatura e kolonës: temperatura e dhomës.
- 4.1.8 Për ta bërë sistemin kromatografik të përmbushë kërkesat e zbulimit, u përcaktua që në kushtet e mësipërme kromatografike, efikasiteti i kolonës së kromatografisë në xhel, pra numri teorik i pllakave (N), të mos ishte më pak se 10000 i llogaritur në bazë të majave të standardit të tripeptideve (Glicinë-Glicinë-Glicinë).
- 4.2 Prodhimi i kurbave standarde të masës molekulare relative
- Tretësirat standarde të peptideve të masës molekulare relative të mësipërme me një përqendrim masiv prej 1 mg/mL u përgatitën me anë të përputhjes së fazës mobile, u përzien në një proporcion të caktuar dhe më pas u filtruan përmes një membrane të fazës organike me madhësi poresh prej 0.2 μm~0.5 μm dhe u injektuan në mostër, dhe më pas u morën kromatogramet e standardeve. Kurbat e kalibrimit të masës molekulare relative dhe ekuacionet e tyre u morën duke paraqitur logaritmin e masës molekulare relative kundrejt kohës së mbajtjes ose me anë të regresionit linear.
4.3 Trajtimi i mostrës
Peshoni me saktësi 10 mg të mostrës në një balonë volumetrike 10 mL, shtoni pak fazë të lëvizshme, tundeni me ultratinguj për 10 minuta, në mënyrë që mostra të tretet dhe të përzihet plotësisht, hollohet me fazën e lëvizshme deri në shkallë dhe më pas filtrohet përmes një membrane të fazës organike me një madhësi poresh prej 0.2 μm~0.5 μm, dhe filtrati u analizua sipas kushteve kromatografike në A.4.1.
- 5. Llogaritja e shpërndarjes relative të masës molekulare
- Pas analizimit të tretësirës së mostrës së përgatitur në 4.3 në kushtet kromatografike të 4.1, masa molekulare relative e mostrës dhe diapazoni i shpërndarjes së saj mund të merren duke zëvendësuar të dhënat kromatografike të mostrës në kurbën e kalibrimit 4.2 me softuerin e përpunimit të të dhënave GPC. Shpërndarja e masave molekulare relative të peptideve të ndryshme mund të llogaritet me metodën e normalizimit të sipërfaqes së majës, sipas formulës: X=A/A total × 100
- Në formulën: X - Pjesa masive e një peptidi me masë molekulare relative në peptidin total në mostër, %;
- A - Sipërfaqja e kulmit të një peptidi të masës molekulare relative;
- Totali A - shuma e sipërfaqeve të kulmeve të secilit peptid të masës molekulare relative, e llogaritur me një shifër dhjetore.
- 6 Përsëritshmëria
- Diferenca absolute midis dy përcaktimeve të pavarura të marra në kushte përsëritshmërie nuk duhet të kalojë 15% të mesatares aritmetike të dy përcaktimeve.
- Shtojca B: Metodat për Përcaktimin e Aminoacideve të Lira
- Miratimi i standardit: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 Reagentë dhe materiale
- Acid acetik akullnajor: analitikisht i pastër
- Acid perklorik: 0.0500 mol/L
- Tregues: Tregues 0.1% vjollcë kristalore (acid acetik akullnajor)
- 2. Përcaktimi i aminoacideve të lira
Mostrat u thanë në 80°C për 1 orë.
Vendoseni mostrën në një enë të thatë për t'u ftohur natyrshëm në temperaturën e dhomës ose për t'u ftohur në një temperaturë të përdorshme.Peshoni afërsisht 0,1 g të mostrës (saktësisht 0,001 g) në një balonë konike të thatë prej 250 mL.Vazhdoni shpejt në hapin tjetër për të shmangur thithjen e lagështirës së ambientit nga mostra.Shtoni 25 mL acid acetik akullnajor dhe përzieni mirë për jo më shumë se 5 minuta.Shtoni 2 pika tregues të vjollcës kristaloreTitrojeni me tretësirë standarde titrimi 0.0500 mol/L (±0.001) të acidit perklorik derisa tretësira të ndryshojë nga vjollcë në pikën përfundimtare.
Regjistroni vëllimin e tretësirës standarde të konsumuar.
- Kryeni testin bosh në të njëjtën kohë.
- 3. Llogaritja dhe rezultatet
- Përmbajtja e aminoacideve të lira X në reagent shprehet si fraksion masiv (%) dhe llogaritet sipas formulës: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, në formulën:
- C - Përqendrimi i tretësirës standarde të acidit perklorik në mol për litër (mol/L)
- V1 - Vëllimi i përdorur për titrimin e mostrave me tretësirë standarde të acidit perklorik, në mililitra (mL).
- Vo - Vëllimi i përdorur për boshllëkun e titrimit me tretësirë standarde të acidit perklorik, në mililitra (mL);
M - Masa e mostrës, në gram (g).
| 0.1445: Masa mesatare e aminoacideve ekuivalente me 1.00 mL tretësirë standarde të acidit perklorik [c (HClO4) = 1.000 mol / L]. | 4.2.3 Tretësirë standarde e titrimit të sulfatit të ceriumit: përqendrimi c [Ce(SO4)2] = 0.1 mol/L, e përgatitur sipas GB/T601. | |
| Miratimi i standardeve: Q/70920556 71-2024 | 1. Parimi i përcaktimit (Fe si shembull) | Komplekset e hekurit të aminoacideve kanë tretshmëri shumë të ulët në etanol anhidër dhe jonet e metaleve të lira janë të tretshme në etanol anhidër, ndryshimi në tretshmëri midis të dyjave në etanol anhidër u përdor për të përcaktuar shkallën e kelimit të komplekseve të hekurit të aminoacideve. |
| Në formulën: V1 - vëllimi i tretësirës standarde të sulfatit të ceriumit të konsumuar për titrimin e tretësirës së provës, mL; | Etanol anhidrik; pjesa tjetër është e njëjtë me klauzolën 4.5.2 në GB/T 27983-2011. | 3. Hapat e analizës |
| Bëni dy prova paralelisht. Peshoni 0.1 g të mostrës së tharë në 103 ± 2℃ për 1 orë, me saktësi deri në 0.0001 g, shtoni 100 mL etanol anhidër për ta tretur, filtroni, mbetja e filtruar lahet me 100 mL etanol anhidër për të paktën tre herë, pastaj transferoni mbetjen në një balonë konike 250 mL, shtoni 10 mL tretësirë acidi sulfurik sipas klauzolës 4.5.3 në GB/T27983-2011, dhe më pas kryeni hapat e mëposhtëm sipas klauzolës 4.5.3 "Ngroheni për t'u tretur dhe më pas lëreni të ftohet" në GB/T27983-2011. Kryeni provën bosh në të njëjtën kohë. | 4. Përcaktimi i përmbajtjes totale të hekurit | 4.1 Parimi i përcaktimit është i njëjtë me klauzolën 4.4.1 në GB/T 21996-2008. |
4.2. Reagentë dhe Tretësira
| 4.2.1 Acid i përzier: Shtoni 150 ml acid sulfurik dhe 150 ml acid fosforik në 700 ml ujë dhe përzieni mirë. | 4.2.2 Tretësirë treguese e difenilaminës sulfonat natriumi: 5g/L, e përgatitur sipas GB/T603. | 4.2.3 Tretësirë standarde e titrimit të sulfatit të ceriumit: përqendrimi c [Ce(SO4)2] = 0.1 mol/L, e përgatitur sipas GB/T601. | |
| 4.3 Hapat e analizës | Bëni dy prova paralelisht. Peshoni 0.1 g të mostrës, me saktësi 020001 g, vendoseni në një balonë konike 250 mL, shtoni 10 mL acid të përzier, pas tretjes, shtoni 30 ml ujë dhe 4 pika tretësirë treguese të dianilin sulfonatit të natriumit dhe më pas kryeni hapat e mëposhtëm sipas klauzolës 4.4.2 në GB/T21996-2008. Kryeni provën bosh në të njëjtën kohë. | 4.4 Përfaqësimi i rezultateve | Përmbajtja totale e hekurit X1 e komplekseve të aminoacideve të hekurit në terma të fraksionit masiv të hekurit, vlera e shprehur në %, u llogarit sipas formulës (1): |
| X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 | V0 - tretësirë standarde e sulfatit të ceriumit e konsumuar për titrimin e tretësirës bosh, mL; | V0 - tretësirë standarde e sulfatit të ceriumit e konsumuar për titrimin e tretësirës bosh, mL; | C - Përqendrimi aktual i tretësirës standarde të sulfatit të ceriumit, mol/L5. Llogaritja e përmbajtjes së hekurit në kelatePërmbajtja e hekurit X2 në kelat në terma të fraksionit masiv të hekurit, vlera e shprehur në %, u llogarit sipas formulës: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100 |
| Në formulën: V1 - vëllimi i tretësirës standarde të sulfatit të ceriumit të konsumuar për titrimin e tretësirës së provës, mL; | V2 - tretësirë standarde e sulfatit të ceriumit e konsumuar për titrimin e tretësirës bosh, mL;nom1-Masa e mostrës, g. Merrni mesataren aritmetike të rezultateve të përcaktimit paralel si rezultate përcaktimi, dhe diferenca absolute e rezultateve të përcaktimit paralel nuk është më shumë se 0.3%. | 0.05585 - masa e hekurit ferroz e shprehur në gram ekuivalente me 1.00 mL tretësirë standarde të sulfatit të ceriumit C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.nom1-Masa e mostrës, g. Merrni mesataren aritmetike të rezultateve të përcaktimit paralel si rezultate përcaktimi, dhe diferenca absolute e rezultateve të përcaktimit paralel nuk është më shumë se 0.3%. | 6. Llogaritja e shkallës së kelimitShkalla e kelimit X3, vlera e shprehur në %, X3 = X2/X1 × 100Shtojca C: Metodat për Përcaktimin e Shkallës së Kelatimit të Zinpro-së |
Miratimi i standardit: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagentë dhe materiale
a) Acid acetik akullnajor: analitikisht i pastër; b) Acid perklorik: 0.0500mol/L; c) Tregues: tregues 0.1% vjollcë kristalore (acid acetik akullnajor)
2. Përcaktimi i aminoacideve të lira
2.1 Mostrat u thanë në 80°C për 1 orë.
2.2 Vendoseni mostrën në një enë të thatë për t'u ftohur natyrshëm në temperaturën e dhomës ose për t'u ftohur në një temperaturë të përdorshme.
2.3 Peshoni afërsisht 0.1 g të mostrës (saktësisht deri në 0.001 g) në një balonë konike të thatë 250 mL
2.4 Vazhdoni shpejt në hapin tjetër për të shmangur thithjen e lagështirës së ambientit nga mostra.
2.5 Shtoni 25 ml acid acetik akullnajor dhe përzieni mirë për jo më shumë se 5 minuta.
2.6 Shtoni 2 pika tregues të vjollcës kristalore.
2.7 Titrojeni me tretësirë standarde titrimi të acidit perklorik 0.0500mol/L (±0.001) derisa tretësira të ndryshojë nga vjollcë në jeshile për 15 sekonda pa ndryshuar ngjyrën si pikë përfundimtare.
2.8 Regjistroni vëllimin e tretësirës standarde të konsumuar.
2.9 Kryeni testin bosh në të njëjtën kohë.
- 3. Llogaritja dhe rezultatet
- Katalanisht
- Physicochemical parameters
V1 - Vëllimi i përdorur për titrimin e mostrave me tretësirë standarde të acidit perklorik, në mililitra (mL).
Vo - Vëllimi i përdorur për boshllëkun e titrimit me tretësirë standarde të acidit perklorik, në mililitra (mL);
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Adresa: Rruga Qingpu Nr. 147, Qyteti Shouan, Qarku Pujiang, Qyteti Chengdu, Provinca Sichuan, Kinë
Telefoni: 86-18880477902
Produkte
Minerale inorganike në gjurmë
- Minerale organike në gjurmë
- Suahili
- Shërbim i personalizuar
- Lidhje të shpejta
Profili i Kompanisë
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Guxharatisht | Klikoni për pyetje | © Të drejtat e autorit - 2010-2025: Të gjitha të drejtat e rezervuara. | Harta e faqes KËRKIMET MË TË MIRA Telefon |
| Tel. | 86-18880477902 | Javanisht | Email |
| 8618880477902 | kinez | frëngjisht | |
| Bird | kinez | frëngjisht | gjermanisht Spanjisht |
| Aquatic animals | Japonez | Koreane | Arabisht grek |
| turk | italiane | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | Indonezisht Afrikanisht suedeze |
polak
- bask
- Katalanisht
- Physicochemical parameters
Hindisht
Lao
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Shona
bullgar
- Cebuanisht
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- Kroatisht
holandez
| Application object | Urdu Vietnamez | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Guxharatisht | Haitian | Hausisht | Kinyarwanda Hmong hungareze |
| Piglets and fattening pigs | Igbo | Javanisht | Kannada Khmer Kurd |
| kirgizisht | latinisht | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | maqedonase Malajisht Malajalamisht |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
Norvegjisht
- Pashto
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
serbisht
Sesotho
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Shona
Sindhi
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
Suahili
Taxhikisht
Tamil
Teluguisht
Tajlandeze
| Application object | Urdu Vietnamez | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Jidish | Joruba | Zulu | Kinyarwanda Orija Turkmen |
| Ujgur | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1.52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
